ZEISS Lattice Lightsheet 7

Cos7細胞Calnexin-mEmeraldおよびEB3-tdTomato（一過性トランスフェクション）EB3は微小管の成長端を標識し、微小管の動きの調節に必要です。カルネキシンは、小胞体のタンパク質です。7秒ごとに1ボリューム、24分間連続で撮影。撮影ボリューム：118 x 113 x 22 μm³。300タイムポイントで、401ボリュームプレーン、合計240,600枚の画像取得。

アクチン-GFP（細胞骨格、シアン）を安定的に発現するU2OS細胞の動態を示すタイムラプス動画。さらに細胞は、MitoTracker™ Red CMXRos（ミトコンドリア、緑）とDraq 5（核、マゼンタ）でもラベル。

Lifeact-tdTomatoを発現するU2OS細胞。連続撮影中に有糸分裂が進行している。最大輝度投影法。2.2秒ごとに1ボリューム（113 x 90 x 11 µm³）、2.5時間連続撮像。4,000タイムポイントで、351ボリュームプレーン、合計1,404,000枚画像取得。

ER-targeted StayGold蛍光タンパク質をトランスフェクションしたCOS-7細胞。最大輝度投影法。露光時間1 ms、40分連続記録。合計802,000枚画像取得。1.1秒間に1ボリューム（105 x 56 x 14 µm³）。
試料ご提供：Miyawaki Atsushi, RIKEN Institute, Japan

Lifeact-tdTomatoを発現させ、MitoTracker Greenで染色したU2OS細胞。上段：シングルカメラ構成。下段：デュアルカメラ構成。クロストークを最小限に抑えている。また、2倍の画像を取得することができるため、時間分解能も2倍に向上している。

左：カラーコード処理したDepth Projection、右：最大輝度投影法 Maximum Intensity Projection。1ボリュームを2.5秒毎、1時間以上にわたって画像取得。試料ご提供：M. Fritzsche, University of Oxford, UK

核膜（抗ラミン、シアン）、アクチン（ファロイジン、マゼンタ）、微小管（抗チューブリン、黄）を染色したマウスの固定卵核胞期卵母細胞。微小管とアクチン構造の高分解能イメージングには、Sinc3 15 x 650 Latticeライトシートを使用しました。微小管の3D構造を動画でご覧頂けます。試料ご提供：C. So, MPI Göttingen, Germany

核膜（抗ラミン、シアン）、アクチン（ファロイジン、マゼンタ）、微小管（抗チューブリン、黄）を染色したマウスの固定卵核胞期卵母細胞。卵母細胞全体のイメージングには、Sinc3 100 x 1,800 Latticeライトシートを使用しました。試料ご提供：C. So, MPI Göttingen, Germany

DeltaD-YFPトランスジェニックゼブラフィッシュ胚（Liao et al. 2016, Nature Communications）。内因性調節領域を含む導入遺伝子により誘導される融合タンパク質で、尾芽と未分節中胚葉に発現。細胞皮質と、輸送小胞（緑）に対応する点にシグナルを確認できます。核はマゼンタで表示。胚は8秒毎に1ボリューム（150 x 50 x 90 µm³）で5分間連続で撮影。試料ご提供：Prof. Andrew Oates, EPFL, Switzerland

輸送mRNA分子（緑）のボリュームイメージング。核はマゼンタで表示。データは最大輝度投影法で表示。2.5秒毎に1ボリューム（86 x 80 x 12 µm³）で記録。試料ご提供：Prof. Andrew Oates, EPFL, Switzerland

核を染色した線虫（C. elegans）胚。この動画は、胚を色分け表示した深さ投影を示しています。胚は700ミリ秒毎に1ボリュームで10分間以上連続で撮影。撮影ボリューム：115 x 50 x 30 μm³。合計101,000枚の画像を記録。1,000時点で体積面101。お客様よりご提供いただいた試料

核を染色した線虫（C. elegans）胚。この動画は、胚を色分け表示した深さ投影を示しています。胚は5分毎に1ボリュームで19時間以上連続で撮影。標準的な睡眠覚醒周期を辿っているのが観察できます。撮影ボリューム：115 x 50 x 30 μm³。合計23,836枚の画像を記録。236時点で体積面101。お客様よりご提供いただいた試料

後期豆期（受精後約400分）の線虫（C. elegans）胚。約560の核をHIS-58::mCherry（マゼンタ）で、中心小体をGFP::SAS-7（緑）で染色。有糸分裂中の細胞が、紡錘体極にHIS-58::mCherryと中心小体の凝縮シグナルを示しています。試料ご提供：N. Kalbfuss, Göncy Lab, EPFL, Switzerland

ミトコンドリア（MitoTracker Green、緑）およびリソソーム（Lysotracker Red、赤）を染色した花粉管。花粉管が花粉粒の亀裂から伸びているのを観察してみましょう（自家蛍光によって可視化）。ミトコンドリアは花粉管の最先端に向かって伸び続けることはせず、先端から数ミクロン手前で停止しています。データセットのレンダリングはarivis Vision4D^®で実施。試料ご提供：R. Whan, UNSW, Sydney, Australia

花粉管内部におけるミトコンドリアの動態を観察してみましょう。ミトコンドリアは端部の先端に向かって移動し、管の中央部に戻っています。ミトコンドリアは輸送中に、修復プロセスのために、および生物分子の共有と分配のために、融合と分裂を繰り返します。試料ご提供：R. Whan, UNSW, Sydney, Australia